ДНК-вакцинация

ДНК-иммунизация — новый высокоэффективный способ специфической профилактики инфекционных болезней, при котором плазмиду, экспрессирующую гены антигенов, вводят в ткани животного или человека. Способ выходит за рамки традиционной иммунопрофилактики и относится к технологиям соматической генной терапии. Российские ветеринарные специалисты недостаточно знакомы с преимуществами ДНК-иммунизации.

Разрабатывают и более эффективные системы — промотор бета-актина, введение интронных последовательностей и др., способные осуществлять экспрессию как отдельных генов антигенов, так и их сочетаний. Иммунный ответ вызывают инъекцией «голой (naked)» ДНК в солевом растворе или в комплексе с липидами. Менее распространенные способы — введение ДНК в легочную ткань в составе мелкодисперсного аэрозоля или с частицами золота непосредственно в эпидермис кожи под давлением воздуха. Плазмидная ДНК при внутрикожной инъекции способна индуцировать более длительный и сильный антигенспецифический иммунный ответ, чем при прямом введении в скелетную мышцу, даже при значительно меньшем ее количестве — 1/500 часть. Разрабатывают подходы к введению плазмидной ДНК через поверхности слизистых оболочек с помощью мутантов Shigella, разрушающихся после проникновения в эпителий кишечника, а также в составе липосомных носителей. По сравнению с «голой» ДНК, способность ДНК-липидного комплекса к экспрессии гена антигена в мышечной ткани понижена, однако при внутривенном его введении экспрессия генов значительно возрастает, так как осуществляется во многих органах, и особенно в селезенке. В таблице 2 приведен сопоставительный анализ свойств традиционных и ДНК-вакцин.

Механизмы иммунного ответа на введение ДНК-вакцин, не исследованы. При иммунизации убитыми (химическими, субъединичными) вакцинами экзогенные антигены разрушаются до пептидов внутри эндосомных компартментов клетки. Далее они появляются на поверхности этих клеток в соединении с молекулами главного комплекса гистосовместимости II класса (МНС-И). Их распознавание СД4 + Т-хэлперными лимфоцитами (Th) побуждает последних к секреции растворимых факторов (цитокинов), регулирующих эффекторные механизмы гуморального иммунного ответа.

Кожа богата антигенпредставляющими клетками (клетки Лангерганса), синтезирующими МНС-II молекулы. Поэтому ДНК, введенная непосредственно в кожу, может быть легко ими захвачена. Однако мышечные ткани небогаты антиген-представляющими клетками (АПК) и их способность к экспрессии высокого уровня МНС-II молекул не описана. Секретируемые белки (поверхностный антиген гепатита В) после синтеза могут высвобождаться из мышечных клеток и захватываться немногочисленными локальными АПК. В то же время появление выраженного гуморального иммунитета в отношении несекретируемых белков трудно объяснить. Если эти белки нецитоплазматические, то они могут не иметь доступа во внеклеточное пространство и не вовлекаться в механизм взаимодействия с МНС-II.

Уровень антител повышается ступенчато, достигая максимума через 6 нед. после однократной иммунизации ДНК-вакциной. При обычной иммунизации уровень антител достигает максимума через 1–2 нед. Это объясняется низким уровнем воспалительной реакции на введение ДНК-вакцины. В результате происходит ограниченная деструкция мышечных клеток, синтезирующих антиген, что создает для АПК длительный источник растворимых антигенов и побуждает их к иммунному ответу. При повреждении мышечной ткани токсином или анестетиком перед введением ДНК иммунный ответ может усиливаться.

Высокий уровень антител отмечен после многократных инъекций плазмидной ДНК. Это явление может иметь два объяснения: более длительный период действия первоначально введенной ДНК; повышение иммунного ответа за счет регенерации мышечных клеток или привлечения АПК в участок первой инъекции. В дальнейшем будут изучены детали механизма защиты от возбудителей инфекционных болезней. В настоящее время важно то, что при данном способе иммунизации протективный эффект установлен на разных экспериментальных моделях.

Эффективность иммунизации
Самок мышей линии BALB/c в 4-, 7- и 10-недельном возрасте иммунизировали 100 мкг плазмидной ДНК с геном нуклеопротеина (NP), клонированным из генома вируса гриппа A/PR/8/34(H 1N1) (рис. 1, А, синие кружки). Мышам контрольной группы вводили по этой же схеме векторную плазмиду без клонированного гена (светлые кружки). В 13-недельном возрасте грызунов инфицировали интраназально 200 LD50вируса А/НК/68 (H3N2). Мышей другой экспериментальной группы вакцинировали по такой же схеме очищенным NP (рис. 1, В, синие квадраты), а контрольной — не иммунизировали (рис. 1, В, светлые квадраты). Животных инфицировали интраназально 200 LD50 вируса А/НК/68 (H3N2).

Интересную конструкцию плазмидного вектора для иммунизации животных против вируса клещевого энцефалита разработал Е.Э. Митрофанов. Вектор включает ген гликопротеина оболочки вириона и ген неструктурного гликопротеина NS1, который находится на поверхности инфицированных вирусом клещевого энцефалита (ВЭК) клеток. Защитный эффект ДНК-иммунизации исследовали на мышах линии BALB/c. Животных 5-кратно иммунизировали 80–100 мкг вектора pSVK3-ENS1 и через неделю после последней прививки инфицировали 100 LD50 ВЭК (штамм Софьин). В контрольной группе заболели все мыши и 43% из них погибли. Животные, иммунизированные ДНК-вакциной, оставались здоровыми в течение всего срока наблюдения.

При изучении длительности иммунного ответа обнаружили, что после ДНК-иммунизации мышей геном поверхностного антигена вируса гепатита В уровень антител выходит на плато на 104 сут и остается стабильным 18 мес. Бустерная иммунизация через 7 мес увеличивала количество антител более чем в 10 раз. Теоретически с помощью ДНК-вакцины при однократном ее введении можно достичь пожизненной резистентности иммунизированных особей к одному или нескольким возбудителям инфекционных болезней.

Противодействие инфекционным болезням, не контролируемым в настоящее время средствами иммунопрофилактики. Мнение о полном контроле за инфекциями с помощью вакцин удерживалось до конца 80-х годов, пока его не поколебала пандемия СПИДа. ДНК-иммунизация также не является всеобщей панацеей. Со второй половины XX столетия все большее значение приобретают возбудители инфекций, которые невозможно контролировать средствами иммунопрофилактики. Персистирование этих микроорганизмов сопровождается феноменом антителозависимого усиления инфекции или интегрированием провируса в геном макроорганизма. Для первых специфическая профилактика может основываться на торможении проникновения возбудителя в чувствительные клетки путем специфического блокирования рецепторов узнавания на их поверхности (вирусная интерференция; водорастворимые соединения, связывающие рецепторы) и ингибировании их внутриклеточного размножения (оли-гонуклеотидное и антисмысловое ингибирование генов возбудителя, каталитическое расщепление мРНК его отдельных белков, уничтожение инфицированных клеток специфическим цитотоксином и др.).
Решение проблемы провируса возможно при клонировании трансгенных животных, например, получение их линий, не содержащих провирус (по-видимому, тоже относится и к животным, пораженным прионными болезнями). Таким образом, ДНК-вакцины следует разрабатывать в отношении возбудителей, персистирование которых не сопровождается антителозависимым усилением инфекции или сохранением провируса в геноме хозяина.

Гены антигенов.
Уникальность ДНК-иммунизации состоит в том, что, используя один и тот же вектор, можно создавать разные вакцины, меняя только последовательности ДНК, кодирующие антигены. ДНК-вакцины должны индуцировать видоспецифический иммунитет и защиту от аэрогенного инфицирования — наиболее опасного в условиях интенсивного животноводства.
Из поверхностных оболочечных белков вирусов наиболее консервативны белки слияния, способствующие проникновению вируса через мембрану эукариотической клетки-мишени. К консервативным антигенам относятся и внутренние (неструктурные) белки, присутствующие на поверхности инфицированных клеток (белок N 91 вируса клещевого энцефалита, е-белок вируса гепатита В, HP-белок вируса гриппа и др.). Гликопротеиновая природа антигенов не лимитирует клонирование их генов в векторах экспрессии. Свою природную (третичную) структуру антиген принимает при гликозилировании в процессе синтеза в клетке млекопитающего. Возможно воспроизведение и более сложной (четвертичной) конформационной структуры антигенов. М. S. Schnell (1994) сконструировал плазмиды, несущие полноразмерную кДНК (12 т. п. н.) аттенуированного вакцинного штамма вируса бешенства. При одновременной экспрессии в трансфицированных клетках белков вируса собираются и отпочковываются инфекционные вирионы или «пустые» капсиды, в зависимости от условий эксперимента.

Для профилактики инфекций, вызываемых грамположительными бактериями, в плазмидный вектор целесообразно включать гены иммуногенных производных белков, определяющих патогенез болезни (например, ген протективного антигена возбудителя сибирской язвы, гены нетоксических производных токсинов возбудителей клостридиозов и др.). Подавляющее большинство грамотрицательных бактерий в патогенезе болезней не имеют ведущего фактора. Поэтому оптимальным является клонирование в плазмидные векторы генов пориновых белков (то, что сделали С. Loper-Macias et al. при конструировании антисальмонеллезной ДНК-вакцины, см. рис. 2), регулирующих проницаемость наружной клеточной мембраны бактерий для веществ с невысокой молекулярной массой и играющих в инфекционном процессе, по-видимому, ту же роль, что и белки слияния вирусов. Порообразующие белки имеют перед другими клеточными антигенами грамотрицательных бактерий преимущества: высокую иммуногенность и видоспецифичность иммунитета, приобретаемого животным; преобладание клеточного звена в иммунном ответе; способность защищать от аэрогенного инфицирования. По данным литературы, гены порообразующих белков, по-видимому, можно использовать при конструировании ДНК-вакцин против возбудителей сапа, мелиоидоза, кампилобактериоза, псевдотуберкулеза, легионеллеза, сальмонеллеза, псевдомоноза, иерсиниоза, листериоза, гемофилеза и др.

Массовая иммунизация ДНК.
Некоторые авторы говорят о дешевизне ДНК-вакцин, однако исследователи, которые сами выделяли плазмидную ДНК, хорошо представляют, что получение в лабораторных условиях 100 мкг плазмид для иммунизации только одной мыши — процесс трудоемкий. Тем более что в любом препарате ковалентно замкнутая кольцевая (кзк) плазмида при хранении постепенно образует открыто кольцевые и линейные формы, трансфецирующая активность которых в 100 и более раз ниже, чем у кзк форм ДНК плазмид. Поэтому ДНК-вакцина, предназначенная для иммунизации животных в условиях хозяйств, должна быть разработана для внутрикожной инъекции, то есть представлять собой композицию, состоящую из мельчайших твердых частиц с сорбированными на них плазмидными ДНК. Внутрикожное введение ДНК-вакцины целесообразно осуществлять сжатым воздухом с помощью специального точно дозирующего аппарата. Альтернативным способом введения ДНК-вакцин могут быть саморазрушающиеся бактериальные векторы, применяемые перорально.
ДНК-вакцины могут стать важным элементом мероприятий, направленных на ликвидацию вспышек новых инфекций. Клонирование в плазмидный вектор с помощью ПЦР гена полноразмерного оболочечного гликопротеина вируса требует не более недели, после этого ДНК-вакцина готова для применения в очаге эпизоотии. В экстренном случае, при неизвестности гена протективного антигена, можно использовать экспрессионную библиотеку генов.

Преимущества ДНК-иммунизации перед распространенными способами иммунопрофилактики массовых инфекционных болезней заключаются в том, что ДНК-вакцины без персистирования в макроорганизме приближают искусственно вызываемый иммунный ответ к возможному при инфицировании природными возбудителями; иммунная реакция на введение генов антигенов сбалансирована и состоит из системного и местного ответов. Каждый из них включает иммуноглобулиновый и клеточный ответы. Иммунный ответ такого типа важен для противодействия инфекциям, вызываемым вирусами и грамотрицательными микроорганизмами.